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游離脂肪酸(FFA)含量檢測試劑盒說明書

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游離脂肪酸(FFA)含量檢測試劑盒說明書

可見分光光度法

注意:正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定。

規(guī)格:50T/48S

產品內容:

提取液:液體 50 mL×1 瓶,室溫保存。

試劑一:自備。實驗前一天,取一個玻璃瓶,按照正庚烷:無水甲醇:氯仿=24:1:25 的比例配置(自備),蓋緊后混勻,室溫保存。

試劑二:液體 16 mL×1 瓶,室溫保存。

試劑三:粉劑×2 瓶,4℃保存。臨用前每瓶加入 32mL 無水乙醇充分溶解,4℃可保存一周。標準品:粉劑×1 支,10mg 棕櫚酸,室溫保存。臨用前把試劑轉移到 10 mL 玻璃瓶中,加入

7.8 mL 氯仿充分溶解,即為 5μmol/mL 的棕櫚酸標準溶液。

產品說明:

FFA 既是脂肪水解的產物,又是脂肪合成的底物。血清中 FFA 的濃度與脂類代謝、糖代謝、內分泌功能有關。

FFA 與銅離子結合形成脂肪酸銅鹽,并溶于氯仿;利用銅試劑法測定銅離子含量,即可推算出游離脂肪酸含量。

自備儀器和用品:

研缽、冰、臺式離心機、可見分光光度計、1mL 玻璃比色皿、可調式移液槍、一個 40mL 玻璃瓶、一個 10 mL 玻璃瓶、正庚烷、無水甲醇、氯仿(三氯甲烷)、無水乙醇和蒸餾水。

操作步驟:

一、樣品中 FFA 提?。?/p>

1、血清中FFA 測定:將所取血液,室溫靜置 1 h 后,于 4 ℃離心機 3500 rpm 離心 15min,取上層血清置于-20℃冰箱保存,待測。

2、組織中 FFA 含量測定:組織用生理鹽水沖洗干凈后,用吸水紙吸取表面水分,稱取約 0.1g,加入 1.0 mL 提取液,勻漿后,8000rpm,4℃離心 10min,取上清液,待測。

二、測定:

1.分光光度計預熱 30 min 以上,調節(jié)波長到 550 nm,無水乙醇調零。

2.試劑二在 37℃水浴中預熱 30 min 以上。

3.標準品的稀釋:將標準品用氯仿稀釋成 1、0.8、0.6、0.4、0.2、0.1、0.05μmol/mL。

4.按下表在 1.5mL 離心管中加入相應試劑

對照管測定管空白管標準管

蒸餾水(μL)50

樣本(μL)50

氯仿(μL)50

標準品(μL)50

試劑一(μL)500

試劑二(μL)200

充分振蕩 10min 后,3000rpm,離心 10min

上層溶液(μL)200

試劑三(μL)800

充分振蕩 2min 后,靜置 15min,于 550 nm 下測吸光值,分別記為 A 對照管、A 測定管、A 空白管、A 標準管。(對照管和空白管各只做一管)

三、FFA 含量計算:

1.標準曲線的繪制:

以標準溶液的濃度為 x 軸,以ΔA 標準(ΔA=A 標準管-A 空白管)為 y 軸,繪制標準曲線,得到方程 y=kx+b。將ΔA(ΔA=A 測定管-A 對照管)帶入方程得到 x。

2.血清中 FFA 含量計算

FFA(μmol/L)=1000x

3.組織中 FFA 含量計算

(1)按樣本蛋白濃度計算

FFA 含量(μmol/mg prot)=x×V 樣總÷(Cpr×V 樣總)=x÷Cpr

(2)按樣本鮮重計算

FFA(μmol/g 鮮重)=x×V 樣總÷W

V 樣總:上清液總體積,1 mL;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;W:樣品鮮重,g。1000:單位換算系數(shù),1L=1000mL。

注意事項:

(1)試劑三配制應盡量晚配,可在操作到加入試劑二時,再配制試劑三。

(2)必須保證每管的震蕩頻率及時間一致。

(3)盡量在 30min 內完成測量,并且測完后要密封好再丟棄。

(4)因所用試劑多數(shù)為有機溶劑,同一支吸頭多次吸取會造成體積不準確,建議更換吸頭。

從2011年開始我們致力于在生命科學領域、生物醫(yī)學實驗技術及論文潤色服務,協(xié)助客戶各類實驗服務及論文潤色十多年,是您值得信賴的科研合作伙伴!

如果您受時間、試驗條件等限制而無法完成您的課題研究,歡迎您與我們聯(lián)系。

 

實驗技術服務:

 



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